Un hombre de 24 años fue trasladado a este hospital por fiebre, fatiga, tos y disnea.
El paciente había estado bien hasta 5 días antes de
esta presentación, cuando comenzó con
fatiga, malestar, fiebre, escalofríos y tos que producía esputo de color
terracota. Tres días antes de esta presentación, se había presentado a un
centro de urgencias clínica con náuseas,
vómitos, disminución del apetito y diarrea. Una radiografía de tórax fue normal
y se le dijo al paciente que tenía una enfermedad viral. Se le administraron
líquidos intravenosos y se le aconsejó que regresara si los síntomas persistían o empeoraban.
Al día siguiente, los síntomas se intensificaron y
el paciente no podía comer o beber debido a náuseas y vómitos persistentes.
Presentaba además dolor de espalda,
cuello, cefalea, y se desarrolló fotofobia. El paciente refirió dolor
torácico posicional y disnea, que progresó rápidamente, de modo que no podía
subir un tramo de escaleras.
El día antes de la presentación en este hospital, se
presentó en otro hospital donde la temperatura era de 36,5 ° C, la presión
arterial 105/66 mm Hg, la frecuencia cardíaca 73 latidos por minuto, la
frecuencia respiratoria 35 respiraciones por minuto y la saturación oxígeno 88% mientras el paciente estaba recibiendo
oxígeno suplementario a través de una cánula nasal a razón de 2 litros por
minuto. En el examen, impresionaba en mal estado general. Los ruidos
respiratorios estaban disminuidos tanto
en campos respiratorios superiores como inferiores y había sibilancias
espiratorias dispersas. Los glóbulos blancos eran de 21,890 por microlitro, con una
concentración de neutrófilos del 45% y
un recuento de bandas del 23%. El recuento de plaquetas fue de 60.000 por
microlitro, el nivel de creatinina 1,37 mg/dl, y el nivel de lactato 3,50 mmol
por litro (32 mg por decilitro; intervalo de referencia, 0,70 a 2,10 mmol por
litro [6,3 a 18,9 mg por decilitro]). Una prueba de ácido nucleico por hisopado
nasofaríngeo para virus de influenza A y
B y virus sincitial respiratorio fue negativo, al igual que un análisis
de sangre para anticuerpos heterófilos.
La radiografía de tórax reveló opacidades
intersticiales reticulonodulares difusas en ambos pulmones.
Se comenzó con vancomicina, ceftriaxona, doxiciclina,
metilprednisolona, y se administraron líquidos por vía intravenosa.
En las siguientes 3 horas, la saturación de oxígeno disminuyó
al 80% mientras el paciente estaba recibiendo oxígeno suplementario a través de
una cánula nasal a razón de 6 litros por minuto. Se inició presión positiva binivel
en las vías respiratorias.
Una tomografía computarizada (TC) del tórax (Fig. 1A
a 1C) reveló opacidades en vidrio esmerilado en ambos pulmones y engrosamiento
de los tabiques interlobulillares. También había pequeños derrames pleurales
bilaterales.
Figura 1. Estudios de imagen del tórax.
Las imágenes axiales de TC (paneles A y B) obtenidas
antes de la presentación en este hospital muestran opacidades difusas en vidrio
esmerilado en ambos pulmones, engrosamiento de tabiques interlobulillares
(flechas) y derrames pleurales bilaterales (asteriscos). Una imagen de TC
coronal (Panel C) muestra opacidades en vidrio esmerilado bilaterales difusas.
Una radiografía (Panel D) obtenida después de la presentación a este hospital
muestra opacidades bilaterales difusas.
La familia del paciente solicitó que el paciente sea
trasladado a este hospital. La tráquea del paciente fue intubada en una situación
que no era de emergencia; infusiones continuas de norepinefrina, propofol e hidromorfona
fueron iniciadas. Se transportó en helicóptero a este hospital, llegando
aproximadamente a las 17 horas después de su presentación en el primer
hospital.
A la llegada del paciente a este hospital, se
obtuvieron datos adicionales de la historia a través de los miembros de la
familia.
El paciente había estado acampando en un bosque de
Nueva Inglaterra durante 9 días antes de la presentación al otro hospital. Cuatro días antes de la
presentación en este hospital, se encontró una garrapata en la cabeza, pero no
había picaduras de garrapatas; sin embargo, tenía muchas picaduras de
mosquitos.
El paciente vivía en la costa del Atlántico medio
con dos gatos en un remolque en el que, según los informes, había moho presente. Disfrutaba de
actividades al aire libre como como bicicleta, senderismo, paseos en bote,
rafting y nadar en agua dulce. Trabajaba en carpintería.
Durante un proyecto de renovación de una casa
aproximadamente 2 semanas antes de esta presentación, había sido mordido por un
ratón para lo que no buscó atención médica.
El paciente tenía antecedentes de lumbalgia crónica.
No tomaba medicamentos y no tenía
alergias conocidas a medicamentos. Había fumado
cigarrillos durante 13 años y había dejado de fumar un año antes. Durante el
año pasado, el paciente usó cigarrillos electrónicos y fumó marihuana diariamente. Sus padres y su
hermano mayor estaban vivos y bien; su abuelo tenía un cáncer gastrointestinal.
La temperatura era de 36,3 ° C, la presión arterial 98/57
mm Hg, la frecuencia cardíaca 78 latidos por minuto, y la saturación de oxígeno
99% mientras el paciente estaba recibiendo oxígeno a través de ventilación
mecánica (presión positiva al final de la espiración [PEEP], 12 cm de agua;
volumen corriente, 500 ml; fracción de oxígeno inspirado [Fio2], 1,0; la
frecuencia respiratoria, de 15 respiraciones por minuto). Las pupilas eran
simétricas y reactivos, los pulmones estaban claros en la auscultación, y no
había erupciones.
El resto del examen físico fue normal. Pruebas para
el serogrupo de Legionella pneumophila 1 y antígenos de Streptococcus
pneumoniae en orina fue negativa, al
igual que las pruebas de hisopado nasofaríngeo para adenovirus,
metapneumovirus, y antígenos del virus de la parainfluenza. Un screening para
anticuerpos contra la inmunodeficiencia humana (VIH) tipos 1 y 2 y VIH tipo 1 y
antígeno p24 fueron negativos. Los resultados del análisis de orina fueron normales.
Se obtuvieron hemocultivos. Otros resultados de las pruebas de laboratorio se
muestran en la Tabla 1.
Una radiografía de tórax obtenida al arribo a este
hospital mostró opacidades difusas bilaterales, con tubos endotraqueales y
entéricos normoinsertos (Fig. 1D).
Una ecocardiografía transtorácica mostró hipocinesia
difusa del ventrículo izquierdo y una fracción de eyección del ventrículo
izquierdo del 45%. Una punción lumbar mostró LCR incoloro; el nivel de proteína
total fue de 31 mg por decilitro, el nivel de glucosa 93 mg por decilitro (5,2
mmol por litro, y el recuento de células nucleadas 1 por microlitro. Una
tinción de Gram reveló pocas células mononucleares y ningún neutrófilo ni organismos.
Se realizó una broncoscopia flexible el primer día de
hospitalización (Fig.2) que mostró eritema difuso e inflamación en las vías
respiratorias, áreas de petequias y hemorragias submucosas dispersas, y escasas secreciones
que fueron más prominentes en el pulmón izquierdo. El líquido de lavado
broncoalveolar era transparente y amarillo; se obtuvieron muestras para
cultivo. Estos hallazgos son inespecíficos y a menudo se ven con procesos
infecciosos o inflamatorios, típicamente acompañado de trombocitopenia.
Figura 2. Imágenes obtenidas durante la
broncoscopia.
El panel A muestra la carina con una vista del
bronquio fuente izquierdo (parte inferior izquierda). Hay evidencia de
hemorragia submucosa y petequias, sin otras anomalías de la mucosa. El panel B
muestra bronquio fuente izquierdo con una vista del inicio lóbulo superior
izquierdo (parte superior derecha) y el inicio del lóbulo inferior izquierdo
(medio). Hay prominentes, hemorragias
submucosas confluentes, así como escasas secreciones claras sin sangrado
activo.
Inició vancomicina, ceftriaxona, y se continuó la
doxiciclina, y gentamicina e inició
furosemida.
Se realizó una prueba de diagnóstica.
DIAGNÓSTICO DIFERENCIAL
Este joven de 24 años previamente sano, presentó fiebre, fatiga, tos y disnea con rápida
progresión a insuficiencia respiratoria hipoxémica respiratoria en ausencia de
síntomas de vías respiratorias
superiores precedentes. Antes del desarrollo de síntomas, tuvo múltiples
exposiciones epidemiológicas, incluyendo una mordedura de roedor, actividades
en agua dulce, picaduras de mosquitos, una garrapata no adherida y la
utilización de cigarrillos electrónicos.
La enfermedad inicial del paciente fue inespecífica
hasta que se desarrolló un trastorno cardiopulmonar abruptamente el cual
condujo a la intubación y al inicio de apoyo vasopresor. Tenía leucocitosis
severa, con bandemia prominente y trombocitopenia, pero había poca o ninguna
participación del hígado o riñones. Además, desarrolló disfunción ventricular
izquierda, y una broncoscopia reveló eritema e inflamación difusos sin purulencia o hemorragia manifiestas. Sobre la
base de sus signos, síntomas y exposiciones, el diagnóstico diferencial es
amplio e incluye lesión pulmonar por cigarrillo electrónico, neumonía adquirida en
la comunidad, leptospirosis, tularemia, peste neumónica, y síndrome
cardiopulmonar por hantavirus.
LESIÓN PULMONAR ASOCIADA A LOS CIGARRILLOS ELECTRÓNICOS
Desde agosto de 2019, un rápido aumento de la
injuria pulmonar asociada a los cigarrillos electrónicos ha sido informada en personas jóvenes por lo demás sanas.1,2 En una serie de casos
en la que participaron 53 pacientes con injuria pulmonar aguda asociada a cigarrillo
electrónico, Layden et al.3 demostraron que los pacientes afectados tienen
dificultad respiratoria progresiva, con una miríada de síntomas
constitucionales. Los infiltrados pulmonares bilaterales difusos ocurren en todos
los pacientes con insuficiencia respiratoria hipoxémica, aunque una profunda
disminución de la saturación de oxígeno arterial suele ser progresiva y no
abrupta y, por lo general, los pacientes no tienen disfunción ventricular o hipoperfusión como
tuvo este paciente. El tiempo del curso de la enfermedad de este paciente
parece ser demasiado rápida para ser atribuida a injuria pulmonar por
cigarrillo electrónico, y el desarrollo de disfunción ventricular y la
hipoperfusión no son coherente con las descripciones de esta enfermedad
pulmonar.
NEUMONÍA ADQUIRIDA EN LA COMUNIDAD
La neumonía adquirida en la comunidad es la causa
más común de fiebre y fallo respiratorio
hipoxémico entre personas por lo
demás sanas.
La neumonía adquirida en la comunidad es
generalmente definida por un infiltrado pulmonar nuevo asociado con dos o más
de los siguientes síntomas: tos nueva o aumentada, producción de esputo,
dificultad para respirar, dolor torácico pleurítico, confusión, fiebre,
estertores y leucocitosis. Puede ser causada por patógenos bacterianos respiratorias comunes de la comunidad, bacterias atípicas como
legionella o mycoplasma, virus u hongos.4
No hay una constelación de hallazgos clínicos para
cada causa de neumonía adquirida en la comunidad que se pueda utilizar para
discriminar definitivamente entre las diferentes causas. Sin embargo, la neumonía viral se caracteriza
por la presencia de síntomas de las vías respiratorias superiores, un contacto
enfermo e infiltrados pulmonares
irregulares, con un recuento de glóbulos blancos normal o mínimamente elevado.5
Ninguna de estas características estaban presentes en este paciente.
Las neumonía causadas por los patógenos bacterianos
de la comunidad se caracterizan
típicamente por la presencia de fiebre, tos
e insuficiencia respiratoria hipoxémica progresiva con consolidaciones
lobares y secreciones purulentas.5 Streptococcus. pneumoniae es responsable de
aproximadamente el 50% de todas las neumonías bacterianas.6 Las imágenes de
tórax de este paciente no mostraron ninguna consolidación alveolar. Además, la
prueba de antígeno estreptocócico enla orina, que tiene un valor predictivo
negativo superior al 90%, fue negativo.7 Por lo tanto, un diagnóstico de
neumonía debido a un patógeno bacteriano
típico sería poco probable en este caso.
Staphylococcus aureus es aislado en el 1 al 2% de
los pacientes con neumonía adquirida en
la comunidad.6 Suele presentarse en pacientes que se recuperan de la influenza
y se asocia con neumonía necrotizante grave.5 Este paciente no tiene algún
síntoma de vías respiratorias superiores que sugieran una infección de
influenza previa; Adicionalmente,la prueba de ácido nucleico para el virus de
la influenza fue negativo, y la tomografía computarizada de tórax no muestran
características de neumonía necrotizante.
Bacterias gramnegativas tales como Klebsiella
pneumoniae son causas poco frecuentes de neumonía de la comunidad, excepto en
pacientes con condiciones subyacentes comofibrosis pulmonar, bronquiectasia, EPOC
o diabetes, así como pacientes que están
inmunodeprimidos, tienen un aumento riesgo de neumonía adquirida en la
comunidad causada por organismos gramnegativos.5 Sin embargo, este paciente estaba
sano y no tenía ninguna de estas condiciones, por lo que una neumonía adquirida
en la comunidad causada por bacterias gramnegativas es un diagnóstico poco
probable en este caso.
Pacientes que tienen neumonía adquirida en la
comunidad causada por bacterias atípicas como micoplasma y clamidofila se
presentan típicamente con infiltrados pulmonares bilaterales inespecíficos que generalmente
se asocian con tos que dura más de 5 días y un normal o mínimamente elevado recuento
de glóbulos blancos.5 Aunque algunos pacientes desarrollan una severa
insuficiencia respiratoria hipoxémica el
tiempo de progresión rara vez es tan abrupto como lo fue en este paciente.
La legionelosis representa del 2 al 9% de los casos
de neumonía adquirida en la comunidad y se caracteriza por la presencia de
fiebre con temperatura de más de 39 ° C con bradicardia relativa asociada, un
nivel elevado de proteína C reactiva, hipofosfatemia, hiponatremia y hematuria microscópica.8,9
Este paciente tenía un aumento de proteína C reactiva e hipofosfatemia, pero
también tenía mialgias severas, linfopenia relativa, trombocitopenia y fiebre
sin bradicardia asociada. Además, tenía un prueba de orina negativa para
antígeno de L. pneumophila serogrupo 1;
esta bacteria es la causa subyacente del 84% de los casos de legionelosis10.
Con la excepción de las micosis endémicas, la neumonía
por hongos es extremadamente rara en pacientes inmunocompetentes, y los hongos
suelen tener un aspecto nodular en la imagen radiográfica11,12.
La incidencia de la micosis endémica en regiones del
Atlántico medio y Nueva Inglaterra en las que este paciente residió y viajó es
bajo. La infección por Blastomyces dermatitidis
se caracteriza por grandes consolidaciones y lesiones cutáneas y la infección con
Histoplasma capsulatum se puede manifestar por infiltrados pulmonares
inespecíficos13,14.
Sin embargo, las manifestaciones en un huésped
inmunocompetente tiende a ser subagudo y no se caracteriza por un deterioro
hiperagudo, como fue visto en este paciente.
LEPTOSPIROSIS
Se ha informado leptospirosis en múltiples estados
en los Estados Unidos y está asociado con exposición al agua dulce. Después de
una incubación de 2 a 26 días, se desarrolla una enfermedad bifásica. La fase
inicial dura aproximadamente 1 semana y se caracteriza por fiebre, escalofríos,
dolor de cabeza, mialgias, náuseas, vómitos y sufusión conjuntival. Después de
la enfermedad aguda, los pacientes están relativamente asintomáticos durante 3
o 4 días antes de comenzar la fase
inmune; esta segunda fase se caracteriza por proteinuria, dolor de cabeza
intenso, e infiltrados pulmonares.15 Aunque los infiltrados pulmonares suelen
ser inespecíficos, los pacientes que desarrollan insuficiencia pulmonar invariablemente
tienen infiltrados hemorrágicos16. La enfermedad del paciente no fue bifásica y
no tenía sufusión conjuntival, anomalías urinarias, ni infiltrados
hemorrágicos.
TULAREMIA
La tularemia es una infección zoonótica causada por bacteria
Francisella tularensis. Los humanos se infectan después del contacto con un
animal infectado o un vector artrópodo. Aunque F. tularensis puede infectar una
amplia variedad de vertebrados, incluidos roedores, la enfermedad se asocia más
comúnmente con conejos y liebres.17 Hay tres diferentes presentaciones clínicas
de tularemia: la forma ulceroglandular, tifoidea y neumónica. La tularemia
neumónica primaria se produce por inhalación
directa de partículas aerosolizadas que contienen F. tularensis. El período
de incubación es corto, de 3 a 5 días.18 Aunque los pacientes suelen tener una
aparición repentina de síntomas similares a los de la influenza, disnea, dolor
de cabeza intenso, náuseas, vómitos, tos seca e infiltrados pulmonares
inespecíficos, rara vez tienen deterioro cardiopulmonar hiperagudo como tuvo
este paciente. El período de incubación prolongado, el deterioro cardiopulmonar
hiperagudo, y la ausencia de contacto con conejos o liebres hace que el
diagnóstico de tularemia sea poco probable en este caso.
PESTE NEUMÓNICA
Yersinia pestis es un cocobacilo gramnegativo que
está asociado con las tres formas de la
peste zoonótica murina: bubónica, septicémica, y neumónica.19
Pacientes con peste neumónica suelen tener un inicio repentino de disnea, fiebre
alta, dolor torácico pleurítico y tos con esputo habitualmente purulento o
sanguinolento. Suelen presentarse con marcada leucocitosis, bandemia y trombocitopenia.19,20
Sin embargo, el período de incubación de la peste neumónica es extremadamente
corto, desde unas pocas horas a pocos
días. En este paciente, la exposición a roedores ocurrió aproximadamente 2
semanas antes del inicio de los síntomas. Además, no tenía esputo purulento o
sanguinolento.
INFECCIÓN POR HANTAVIRUS
Los hantavirus son virus murinos asociados con dos
presentaciones clínicas graves: la fiebre hemorrágica con síndrome renal y
el síndrome cardiopulmonar por
hantavirus. Los hantavirus del "Viejo Mundo” se asocian con
fiebre hemorrágica con síndrome renal y hantavirus del "Nuevo
Mundo" se asocian con el síndrome
cardiopulmonar por hantavirus22,23 El síndrome cardiopulmonar por hantavirusse
describió por primera vez en 1993 durante un brote de fiebre inexplicable y síndrome
de dificultad respiratoria aguda (SDRA) entre miembros de la tribu Navajo en la
frontera norte entre Nuevo México y Arizona.24 Desde 1993, se han notificado un
total de 728 casos por los Centros para el Control de Enfermedades y Prevención
(CDC) .25 El virus Sin Nombre es la causa más común de síndrome cardiopulmonar
por hantavirus en los Estados Unidos, y el huésped natural es el ratón ciervo
(deer mouse) (Fig.3) .23
Figura 3. Síndrome cardiopulmonar por hantavirus.
El virus Sin Nombre se elimina en la orina, la
saliva y las heces de su reservorio natural, el ratón ciervo Peromyscus
maniculatus (Panel A). Después de que la persona es infectada por inhalación o
inoculación directa, la carga viral aumenta rápidamente hasta que comienzan a
aparecer los síntomas y desarrolla los anticuerpos. El curso típico se puede
dividir en cinco fases: un período de incubación (2 a 4 semanas), una fase
prodrómica (3 a 5 días), un fase cardiopulmonar (5 a 7 días), fase diurética (2
a 3 días) y fase convaleciente que puede durar meses o años (Panel B). Los
síntomas clínicos más comunes en cada fase se muestran en la figura.
La exposición al
virus Sin Nombre puede ocurrir por inhalación de partículas aerosolizadas
de heces contaminadas, orina o saliva o por inoculación directa de una
mordedura de animal. El período de incubación es 2 a 4 semanas y es seguido por
una fase prodrómica que dura de 3 a 5
días. Esta fase se caracteriza por fiebre alta, mialgias, malestar, dolor de
cabeza intenso con dolor de cuello, dolor abdominal asociado con náuseas y
vómitos, y ocasionalmente diarrea. Leucocitosis grave con bandemia, y también
se desarrolla trombocitopenia. Ahí es típicamente mínima o nula participación
del hígado o riñones. la fase prodrómica es seguida por una progresión abrupta a la fase
cardiopulmonar, que se caracteriza por productiva tos con secreciones no
purulentas y disnea con dificultad respiratoria grave. La depresión miocárdica con aumento de la resistencia vascular
periférica es común26.
Este paciente fue mordido por un ratón
aproximadamente 2 semanas antes de su presentación al primer hospital. Tenía
síntomas inespecíficos, incluyendo fiebre, escalofríos, mialgias y dolor
abdominal, con una combinación de leucocitosis, bandemia, trombocitopenia y
afectación pulmonar durante 3 días. Posteriormente, en unas horas después de su
presentación en el primer hospital, desarrolló un trastorno cardiopulmonar e
hipoperfusión abruptamente que condujo a la intubación e inicio de la terapia
con vasopresores. La constelación de sus síntomas es muy sugerente de síndrome
cardiopulmonar por hantavirus.
Para establecer la presencia de infección por virus
Sin Nombre, se debe realizar pruebas serológicas para hantavirus. Anticuerpos
(IgM e IgG) contra el virus Nombre se desarrolla rápidamente durante el período
prodrómico y están presentes casi
universalmente durante la fase cardiopulmonar. La presencia de estos anticuerpos
confirmaría el diagnóstico del síndrome cardiopulmonar por hantavirus27.
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO
SÍNDROME CARDIOPULMONAR POR HANTAVIRUS DEBIDO A
INFECCIÓN POR EL VIRUS SIN NOMBRE.
DISCUSIÓN PATOLÓGICA
La prueba diagnóstica fue un ensayo inmunoabsorbente
ligado a enzimas para virus Sin Nombre, que fue positivo tanto para IgM e IgG a
títulos de 1: 6400 o superiores (valor de referencia títulos menores a 1: 400). Un ensayo cualitativo para
detectar ácidos nucleicos hantavirales en la sangre también fue positivo.
Las pruebas serológicas, las pruebas de ácido
nucleico y la tinción inmunohistoquímica son métodos aceptables para la
confirmación diagnóstica de síndrome cardiopulmonar por hantavirus. La prueba
serológica de IgM específica para hantavirus es la prueba de diagnóstico más
comúnmente realizada, porque casi todas las personas infectadas tendrán IgM
específica de hantavirus al inicio de los síntomas.28 La IgG específica de
hantavirus a menudo está también presente en la sangre poco después del inicio de
enfermedad y puede persistir durante meses o años después de que haya ocurrido
la enfermedad aguda; la detección de títulos crecientes de IgG específica de
hantavirus en las muestras seriadas también se pueden utilizar para
diagnóstico.28,29 Las pruebas de ácidos nucleicos para la detección de la
viremia por hantavirus puede ser una herramienta útil de diagnóstico sólo si se
realiza al principio en el curso de la enfermedad aguda, ya que los niveles en
sangre del virus disminuyen rápidamente después de la aparición de síntomas.30
La tinción inmunohistoquímica para antígenos hantavirales en tejidos puede
también ser llevada a cabo. En este caso elpaciente reunía los criterios de
laboratorio para definición de caso de síndrome pulmonar por hantavirus como lo
especifican los CDC.29 Dado el síndrome clínico del paciente, el diagnóstico de síndrome pulmonar por
hantavirus fue confirmado.
El tratamiento del síndrome pulmonar por hantavirus es
principalmente de sostén y la mortalidad se aproxima al 40%.25 Aunque el
antiviral ribavirina tiene eficacia in vitro contra especies de hantavirus, los
datos clínicos sobre su eficacia son mixtos, y los efectos tóxicos de este
medicamento son comunes.30 Como tal, el uso de este agente para el tratamiento del
síndrome cardiopulmonar por hantavirus no es recomendado.
DISCUSIÓN DEL MANEJO
El manejo de la enfermedad de este paciente comenzó
incluso antes de que se lo transfirieran a nuestra unidad de cuidados
intensivos (UCI). Información disponible en el momento del triaje fue que un
hombre joven, previamente tenía
insuficiencia respiratoria que había progresado en el transcurso de 12 horas
desde cuando estaba recibiendo oxígeno suplementario a través de una cánula
nasal a razón de 2 litros por minuto a cuando estaba recibiendo binivel a
presión positiva de las vías respiratorias al 100% Fio2, con una presión de inhalación
de 14 cm de agua y una presión de exhalación de 8 cm de agua. En estos ajustes,
el el paciente tenía una presión parcial de oxígeno arterial (Pao2) de 70 mm
Hg. También había aumentado el trabajo respiratorio, y se observaban infiltrados pulmonares bilaterales en la imagen. Dada la repentina aparición de
síntomas (menos de 7 días), opacidades bilaterales vistas en la radiografía de
tórax y la TC de tórax, ausencia de evidencia de edema pulmonar cardiogénico, y
una saturación de oxígeno gravemente alterada, el paciente cumplía los
criterios para el SDRA31. La gravedad del SDRA se clasifica sobre la base de la
proporción de Pao2 a Fio2 con el paciente recibiendo oxígeno por estrategias ventilatorias invasivas o no
invasivas con un PEEP mínimo de 5 cm de agua. La relación de Pao2 a Fio2 de
este paciente fue de 70 mm Hg, por lo que cumplía criterio de SDRA grave; El SDRA severo
tiene una mortalidad estimada del 45% .31 Aunque la ventilación no invasiva,
como presión positiva binivel en la vía
aérea , se utiliza para soporte respiratorio en algunos pacientes con
insuficiencia respiratoria hipoxémica, hay datos que sugieren una disminución
de la mortalidad con el uso de ventilación mecánica invasiva, particularmente
entre los pacientes con SDRA más grave (Pao2: Fio2 menos 150 mm Hg) .32 Por lo
tanto se solicitó intubación antes del traslado del paciente a este hospital.
A la llegada del paciente a la UCI, el enfoque principal era asegurar que la configuración del ventilador estuviera ajustado apropiadamente para el manejo de un SDRA. Hay datos convincentes para apoyar el uso de ventilación con volumen corriente bajo en pacientes con SDRA. Una estrategia de ventilación implica un volumen corriente bajo (6 ml por kilogramo de peso corporal ideal) se ha demostrado estar asociado con una mortalidad significativamente menor y menos días de dependencia del ventilador que estrategias que implican mayores volúmenes corrientes.33 Los volúmenes corrientes de este paciente se establecieron en 6 ml por kilogramo de su peso corporal ideal, y su saturación se mejoró aún más mediante el ajuste de la PEEP y con el uso de diuresis suave. En casos severos de insuficiencia respiratoria hipoxémica refractaria, existen intervenciones adicionales disponibles, con robustez variable de datos para apoyar su uso. Un ensayo que evaluó elposicionamiento prono entre pacientes con SDRA grave mostró una incidencia de muerte significativamente menor a los 28 y 90 días entre los pacientes que habían sido colocados en posición prona al principio del curso de su enfermedad que entre los que habían quedado en decúbito supino34. La administración de agentes paralíticos al comienzo del curso del SDRA se había informado previamente que reducía la mortalidad a los 90 días y aumentaba el número de días libres deventiladores.35 Sin embargo, estos resultados han sido cuestionado en el contexto de protocolos de sedación utilizados en la UCI; sobre la base de estudios más recientes, la necesidad de parálisis puede en algunos casos ser obviada.36 Otra posibleintervención es la administración de vasodilatadores pulmonares inhalados, que pueden resultar en abatimiento de la hipoxemia mejorando la relación ventilación/ perfusión, aunque esta terapia no se ha demostrado que afecte los resultados a largo plazo. 37 Por último, para los pacientes que tienen hipoxemia refractaria a pesar de intervenciones agresivas, la oxigenación por membrana extracorpórea puede ser considerada. La saturación de oxígeno de este paciente comenzó a mejorar después del ajuste de su ventilador en combinación con pequeñas cantidades de diuresis.
Este paciente recibió inicialmente un amplio
espectro de antibióticos y asistencia respiratoria.
Cuando los cultivos no revelaron evidencia de
patógenos bacterianos, se suspendió la
terapia antimicrobiana. Durante los siguientes días, el paciente mejoró el
estado respiratorio y su tráquea se extubó el día 3 de hospitalización. Para el
día 5 de hospitalización, era capaz de deambular de forma independiente, y fue
dado de alta a casa con planes de seguimiento con su médico de atención
primaria.
DIAGNÓSTICO FINAL
SÍNDROME PULMONAR POR HANTAVIRUS
Traducción de :
A 24-Year-Old
Man with Fever, Cough, and Dyspnea
Nicolas Barros,
M.D., Shaunagh McDermott, M.D., Alexandra K. Wong, M.D.,
and Sarah E.
Turbett, M.D.
https://www.nejm.org/doi/10.1056/NEJMcpc1916256
References
1. Case Records
of the Massachusetts
General Hospital
(Case 38-2019). N Engl J
Med 2019; 381:
2353-63.
2. Hartnett KP,
Kite-Powell A, Patel MT,
et al. Syndromic
surveillance for e-cigarette,
or vaping,
product use–associated
lung injury. N
Engl J Med 2020; 382: 766-
72.
3. Layden JE,
Ghinai I, Pray I, et al. Pulmonary
illness related
to e-cigarette use
in Illinois and
Wisconsin — final report.
N Engl J Med
2020; 382: 903-16..
4. Metlay JP,
Waterer GW, Long AC, et al.
Diagnosis and
treatment of adults with
community-acquired
pneumonia: an official
clinical
practice guideline of the
American
Thoracic Society and Infectious
Diseases Society
of America. Am J Respir
Crit Care Med
2019; 200(7): e45-e67.
5. Musher DM,
Thorner AR. Communityacquired
pneumonia. N
Engl J Med 2014;
371: 1619-28.
6. Jain S, Self
WH, Wunderink RG, et al.
Community-acquired
pneumonia requiring
hospitalization
among U.S. adults.
N Engl J Med
2015; 373: 415-27.
7. Smith MD,
Sheppard CL, Hogan A, et al.
Diagnosis of
Streptococcus pneumoniae
infections in
adults with bacteremia and
community-acquired
pneumonia: clinical
comparison of
pneumococcal PCR and
urinary antigen
detection. J Clin Microbiol
2009; 47:
1046-9.
8. Cunha BA,
Burillo A, Bouza E. Legionnaires’
disease. Lancet
2016; 387: 376-85.
9. Fiumefreddo
R, Zaborsky R, Haeuptle
J, et al.
Clinical predictors for Legionella
in patients
presenting with communityacquired
pneumonia to the
emergency
department. BMC
Pulm Med 2009; 9: 4.
10. Avni T,
Bieber A, Green H, Steinmetz
T, Leibovici L,
Paul M. Diagnostic accuracy
of PCR alone and
compared to urinary
antigen testing
for detection of Legionella
spp.: a
systematic review. J Clin
Microbiol 2016;
54: 401-11.
11. Perfect JR,
Dismukes WE, Dromer F,
et al. Clinical
practice guidelines for the
management of
cryptococcal disease:
2010 update by
the Infectious Diseases
Society Of
America. Clin Infect Dis 2010;
50: 291-322.
12. Patterson
TF, Thompson GR III, Denning
DW, et al.
Practice guidelines for the
diagnosis and
management of aspergillosis:
2016 update by
the Infectious Diseases
Society of
America. Clin Infect Dis
2016; 63(4):
e1-e60.
13. Wheat LJ,
Freifeld AG, Kleiman MB,
et al. Clinical
practice guidelines for the
management of
patients with histoplasmosis:
2007 update by
the Infectious Diseases
Society of
America. Clin Infect Dis
2007; 45:
807-25.
14. Chapman SW,
Dismukes WE, Proia
LA, et al.
Clinical practice guidelines for
the management
of blastomycosis: 2008
update by the
Infectious Diseases Society
of America. Clin
Infect Dis 2008; 46: 1801-
12.
15. Bharti AR,
Nally JE, Ricaldi JN, et al.
Leptospirosis: a
zoonotic disease of global
importance.
Lancet Infect Dis 2003; 3:
757-71.
16. Bethlem EP,
Carvalho CR. Pulmonary
leptospirosis.
Curr Opin Pulm Med 2000;
6: 436-41.
17. Nigrovic LE,
Wingerter SL. Tularemia.
Infect Dis Clin
North Am 2008; 22: 489-
504.
18. World Health
Organization. WHO
guidelines on
tularaemia: epidemic and
pandemic alert
and response. Atlanta:
Centers for
Disease Control and Prevention,
2007
(https://stacks .cdc .gov/ view/ cdc/
6943).
19. Prentice MB,
Rahalison L. Plague.
Lancet 2007;
369: 1196-207.
20. Pechous RD,
Sivaraman V, Stasulli
NM, Goldman WE.
Pneumonic plague:
the darker side
of Yersinia pestis. Trends
Microbiol 2016;
24: 190-7.
21.
Ratsitorahina M, Chanteau S, Rahalison
L, Ratsifasoamanana L, Boisier P.
Epidemiological
and diagnostic aspects
of the outbreak
of pneumonic plague in
Madagascar. Lancet 2000; 355: 111-3.
22. Avšič-Županc T, Saksida A, Korva M.
Hantavirus
infections. Clin Microbiol Infect
2019; 21S:
e6-e16.
23. Jonsson CB,
Figueiredo LTM, Vapalahti
O. A global
perspective on hantavirus
ecology,
epidemiology, and disease. Clin
Microbiol Rev
2010; 23: 412-41.
24. Outbreak of
acute illness — southwestern
United States,
1993. MMWR
Morb Mortal Wkly
Rep 1993; 42: 421-4.
25. Hantavirus
disease, by state of reporting.
Atlanta: Centers
for Disease Control
and Prevention,
2017 (https://www .cdc .gov/
hantavirus/
surveillance/ reporting -state
.html).
26. Sargianou M,
Watson DC, Chra P, et al.
Hantavirus
infections for the clinician:
from case
presentation to diagnosis and
treatment. Crit
Rev Microbiol 2012; 38:
317-29.
27. Mertz GJ,
Hjelle B, Crowley M, Iwamoto
G, Tomicic V, Vial PA. Diagnosis
and treatment of
new world hantavirus
infections. Curr
Opin Infect Dis 2006; 19:
437-42.
28. Jenison S,
Yamada T, Morris C, et al.
Characterization
of human antibody responses
to Four Corners
hantavirus infections
among patients
with hantavirus
pulmonary
syndrome. J Virol 1994; 68:
3000-6.
29. Case
definitions for infectious conditions
under public
health surveillance.
MMWR Recomm Rep
1997; 46(RR-10): 1-55.
30. Kruger DH,
Figueiredo LTM, Song
J-W, Klempa B.
Hantaviruses — globally
emerging
pathogens. J Clin Virol 2015; 64:
128-36.
31. Ranieri VM,
Rubenfeld GD, Thompson
BT, et al. Acute
respiratory distress
syndrome: the
Berlin definition. JAMA
2012; 307:
2526-33.
32. Bellani G,
Laffey JG, Pham T, et al.
Noninvasive
ventilation of patients with
acute
respiratory distress syndrome: insights
from the LUNG
SAFE Study. Am J
Respir Crit Care
Med 2017; 195: 67-77.
33. The Acute
Respiratory Distress Syndrome
Network.
Ventilation with lower
tidal volumes as
compared with traditional
tidal volumes
for acute lung injury and
the acute
respiratory distress syndrome.
N Engl J Med
2000; 342: 1301-8.
34. Guérin C,
Reignier J, Richard J-C, et al.
Prone
positioning in severe acute respiratory
distress
syndrome. N Engl J Med
2013; 368:
2159-68.
35. Papazian L,
Forel J-M, Gacouin A, et al.
Neuromuscular
blockers in early acute respiratory
distress
syndrome. N Engl J Med
2010; 363:
1107-16.
36. The National
Heart, Lung, and Blood
Institute PETAL
Clinical Trials Network.
Early
neuromuscular blockade in the acute
respiratory
distress syndrome. N Engl J
Med 2019; 380:
1997-2008.
37. Siobal MS,
Hess DR. Are inhaled vasodilators
useful in acute
lung injury and
acute
respiratory distress syndrome?
Respir Care
2010; 55: 144-61.